胎牛血清的储存通常建议在-20℃，如需长期保存则可选择-80℃的温度。在解冻过程中，避免将血清直接置于常温（25-37℃）下，因这容易产生絮状沉淀，进而可能对血清的品质造成影响。推荐的解冻方式是将血清从-20/-80℃转移至4℃，待完全化冻后再转至室温。在解冻过程中，需轻轻晃动血清，以确保其成分与温度均匀混合，从而减少沉淀的产生。

解冻后的胎牛血清可以分装至15mL或50mL的无菌离心管中进行冻存。根据使用频率，建议可在4℃下保存一管已化冻的血清，以便频繁配制培养基。然而，4℃下的储存时间不宜过长，最好在一个月内使用完毕。不建议将解冻后的血清在37℃或室温下存放过久，以避免重要细胞生长因子的失活，从而影响细胞的状态。

在使用胎牛血清时，添加量不宜过多，通常推荐5%、10%或20%浓度。大多数细胞在培养时使用10%的血清，而某些原代细胞则可能需要20%的血清浓度。具体适合某种细胞的血清浓度需基于细胞特性及实验目的进行调整。

热灭活（一般处理条件为56℃，30分钟）能够去活化补体，补体参与的反应如溶细胞活性等。因此，在某些特殊实验中可能需要进行热灭活，但对大多数常规细胞培养而言并非必要。经过热灭活处理的血清对细胞生长的作用极小，甚至因为高温处理而降低血清质量，影响细胞生长速率，增加沉淀。

在细胞培养中，可能会遇到需要更换血清的情况。如果直接使用新的血清进行培养，可能导致之前生长良好的细胞突然变缓甚至脱壁死亡。这通常是因为细胞已经适应了原有的培养环境，突如其来的营养环境改变会导致细胞不适。因此，在更换血清时，建议采取梯度替换法，以帮助细胞适应新的培养条件。在复苏细胞时，最好使用原培养体系，等细胞状态恢复后再加以测试，而测试时应遵循1:3、1:1、3:1的比例逐渐替换。

若解冻后发现少量乳白色的絮状物，主要是由血清中的脂蛋白及纤维蛋白所致，这些物质一般不会影响血清的质量。可以通过400×g离心5分钟后取上清，通常不会对细胞产生太大影响。

一般情况下，厂家提供的胎牛血清为无菌状态，通常无需再进行过滤。如发现悬浮物，应将血清加入培养液中共同过滤，而不是直接过滤血清。若在细胞培养过程中观察到黑点，应首先检查培养基是否混浊，如果黑点随之而动而不规则，则可能是细胞受到了污染。污染包括细菌及支原体等。如果在显微镜下观察细胞状态良好且未发生变化，黑点出现可能与以下几种情况有关：细胞生长过程中的细胞残骸、反复冻融造成的血清杂质，或是水质和容器不合格导致的问题。这些黑点可以通过离心或过滤的方法去除，对于原代细胞的小黑点可能是来源于原代组织中的杂质，经过多次传代可逐步消除。

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